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C E I H Dolores - Bs.As. ARGENTINA

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INTRODUCCIÓN
   
    En los últimos años se ha producido un importante avance en el desarrollo de nuevas drogas. Los antibióticos no escapan a esta regla. Entre estos, los ß lactámicos y ß cefalosporámicos han aportado a la solución de problemas terapéuticos en las áreas de espectro y potencia bactericida.

    Las cefalosporinas por su amplio espectro y baja toxicidad, constituyen un arma segura e importantísima contra los patógenos bacterianos y están siendo utilizadas en forma creciente en medicina veterinaria.

    Dentro de este grupo, la cefoperazona (CPZ), miembro de tercera generación, semisintético e inyectable (Neu, 1980), tiene una mayor actividad antibacteriana (Mitsuhashi 1980) y más extensa distribución que los otros integrantes (Gibbs, 1987; Mitsuhashi, 1980).

    Esta intensa actividad antibacteriana, principalmente contra Pseudomonas aeruginosa y Serratia marcescens es debida a su resistencia a las  ß lactamasas (Balant et al 1985; Livermore  et al, 1981), características que la hacen ventajosa respecto del grupo de las penicilinas (Balant et al, 1985; Hinkle et al, 1980; Neu et al, 1979).

    En el hombre, la farmacocinética de la CPZ luego de su aplicación IM ha mostrado que las concentraciones inhibitorias mínimas pueden mantenerse en plasma durante más de 12 horas, (Guerini et al, 1985; Shimizu et al, 1980), lo que representa otra ventaja frente a sus congéneres (Carli et al, 1986).

    Probablemente esta acción sea consecuencia del alto porcentaje de "binding" a las albúminas (90%), (Balant et al, 1980; Bergam, 1987; Dayer et al, 1981; Decroix, 1988). La fijación a las albúminas puede influir en la distribución y en el destino de estos fármacos dada su gran fijación, representando un pool de droga temporario de fácil disociación, lo que prolonga su vida media en sangre (Baggot, 1986; Decroix, 1988).

    La utilización de la carne como alimento, (tanto de Tupinambis como de Caiman) hace necesario conocer además la permanencia de residuos en tejidos para determinar tiempos de retirada correctos que hagan seguro su consumo humano, problema que en el caso de los poiquilotermos es aún más complicado que en los homeotermos.

    Los quelonios, son probablemente las mascotas más populares entre los reptiles, desconociendo generalmente los veterinarios hasta los conceptos más básicos sobre su manejo. Las diferencias en la vida media de la gentamicina en especies de quelonios y serpientes estadounidenses han sido estudiadas y demostradas (Bush, M. et al, 1985) con el consecuente diseño de planes terapéuticos específicos para cada caso.

    Se hace necesario contar con datos sobre los quelonios argentinos. Chelonoide chilensis es también una especie protegida habiéndose iniciado una campaña en nuestro país, por parte de organizaciones conservacionistas, para recuperar ejemplares mantenidos como mascotas y reintroducirlos al medio ambiente. Consideramos tal proceder totalmente inadecuado y peligroso, existiendo antecedentes en USA de inroducción de enfermedades a regiones donde no se las había detectado con anterioridad a la introducción artificial de especímenes. Sin embargo, de realizarse,  estos animales deberían estar necesariamente libres de patógenos antes de su reintroducción, ya que de lo contrario se corre el riesgo de diseminar patógenos infecciosos y/o parasitarios de una región a otra del país; situación sumamente grave si consideramos que los quelonios pueden ser vectores de distintas zoonosis.


METODOLOGÍA

    Los Tupinambis son alojados en terrarios, controlando la temperatura mediante lámparas IR en cada terrario o calefaccionando la habitación mediante un sistema con termostato.

    Los ofidios se mantienen en terrarios con similar sistema de calefacción. Las especies acuáticas se pueden alojar, de considerarlo necesario, en boxes plásticos con agua, contolando la temperatura de la habitación  y además la temperatura del agua con calefactores para acuarios.

    Caiman son mantenidos en piletas pequeñas con el agua a temperatura controlada.

    Los reptiles no reciben alimentación desde una semana antes a la experiencia.
    Se administran 100 mg/kg de cefoperazona por vía intramuscular (IM) como dosis única a cada animal. La administración se realiza a nivel de los músculos dorsales en serpientes, dorsocaudales en lagartos y caimanes e isquiotibiales en tortugas, la mitad de volumen de cada lado. Se toman 2 muestras de sangre previas a la administración de la droga y luego de la administración a las 0.5, 1, 2, 4, 6, 8, 10, 12, 18, 24, 48, 72 y 96 horas (13 muestras).

    Se dejan coagular las muestras en estufa a 27 ºC y se centrífuga, separándose el suero y almacenándose a -20 ºC hasta su ensayo.

Determinación de Cefoperazona por Método Biológico

    El método biológico consiste en la siembra en placas de un microorganismo conocido en un medio de cultivo estandarizado. En este medio se distribuyen pequeños cilindros de metal dentro de los cuales se colocan concentraciones conocidas de un antimicrobiano, las que darán lugar a halos de inhibición del crecimiento del microorganismo. La lectura de esos halos, se grafica en función de la concentración a efectos de trazar una línea de regresión, en la que posteriormente se interpolarán los datos de halos obtenidos de muestras con concentraciones desconocidas, extrapolándose las concentraciones correspondientes.


ANÁLISIS FARMACOCINÉTICO

    Luego de la obtención de las concentraciones en función del tiempo, se grafican los mismos en forma aritmética y en forma semilogarítmica. La discriminación del modelo farmacocinético que mejor describe el perfil de la concentración en función del tiempo se lleva a cabo aplicando el test MAICE (Minimum Akaike Information Criterion Estimation). 
 
    Por análisis de regresión lineal los parámetros farmacocinéticos a estudiar son:

• B (intersección de la fase de eliminación ß con el eje Y)
• ß (constante de la tasa de eliminación)
• T½ ß  (tiempo medio de eliminación)
• Kab (constante de la tasa de absorción)
• T½ ab (tiempo medio de absorción)
• Cmax (concentración sérica máxima)
• Tmax (tiempo al que se presenta la concentración máxima)
• Lag Time (tiempo transcurrido hasta la aparición en suero de concentraciones mensurables)